ИСТИНА

Актуальность проблемы. Транспортно-матричная РНК впервые обнаружена в клетках E.coli более 30 лет назад, но ее функция была установлена только в 1996 году. тмРНК содержит элементы как мРНК, так и тРНК. Матричная часть тмРНК кодирует пептид, являющейся сигналом узнавания специфическими протеазами (tag-пептид). тРНК-подобная часть тмРНК может быть аминоацилирована. В аминоацилированном состоянии тмРНК взаимодействует с рибосомой, в которой синтез белка блокирован деградированной мРНК, не содержащей сигнала терминации. тмРНК входит в такие заблокированные рибосомы, полипептидная цепь переносится на молекулу тмРНК, после чего трансляция продолжается по матричной части тмРНК, завершающейся стоп-кодоном, на котором рибосома может терминировать с помощью обычных клеточных механизмов. Синтезированный при участии тмРНК неполноценный белок несет tag-пептид, что приводит к его быстрому гидролизу специфическими протеазами. Таким образом, с помощью тмРНК клетка избавляется от потенциально опасных незавершенных пептидов и поврежденных мРНК и освобождает рибосомы для дальнейшего синтеза. После открытия биологической роли тмРНК, структура и функции этой молекулы изучаются очень активно, однако детальных данных о механизме транс-трансляции пока нет. Наши исследования были направлены на изучение взаимодействия тмРНК с рибосомой, а именно как такая большая и высокоструктурированная молекула проходит через рибосому в процессе синтеза tag-пептида. Данная работа посвящена исследованию механизма процесса транс-трансляции, и созданию модели его протекания. Цель работы. 1. Определить состав и соотношение компонентов комплексов рибосомы с тмРНК, заблокированных на различных этапах транс-трансляции. 2. Определить структуру комплекса тмРНК с рибосомой на стадии элонгации транс-трансляции с помощью криоэлектронной томографии. 3. Проследить за изменениями в структуре тмРНК и ее контактов с другими компонентами тмРНК-рибосомных комплексов, остановленных на различных этапах транс-трансляции. 4. Предложить механизм прохождения тмРНК через рибосому в процессе транс-трансляции. Научная новизна и практическая значимость работы. В ходе данной работы впервые удалось выделить комплексы тмРНК с рибосомой, отражающие различные этапы прохождения тмРНК через рибосому. Для выделения комплекса был использован аффинный домен, расположенный на месте псевдоузла 3 в тмРНК. Успешное выделение комплекса возможно только в том случае, если этот домен расположен на поверхности рибосомы. Показано, что белок SmpB, который, как предполагалось ранее, необходим на стадии инициации транс-трансляциии, входит в состав элонгационного и терминационного комплексов, что говорит о его важности для протекания процесса транс-трансляциии. Показано, что при облучении УФ-светом тмРНК формирует ряд сшивок как с рРНК, так и с белками, причем в основном эти сшивки образуются белками 30S субчастицы рибосомы. Методом криоэлектронной томографии было продемонстрировано, что состоящая из псевдоузлов петля тмРНК может занимать различные положения на рибосоме, в пределах от «плеча» до вершины «головы» 30S субчастицы рибосомы, что указывает на ее конформационную подвижность в растворе. Положения концов данной петли тмРНК на рибосоме соответствуют входу и выходу из канала мРНК, из чего следует вывод, что мРНК-подобная часть тмРНК располагается в канале мРНК. С помощью метода химического пробинга исследованы спектры модификаций нуклеотидов тмРНК в различных комплексах с рибосомой. Показано, что структура и контакты тмРНК (за исключением мРНК-подобного домена (MLD) и спирали 5) практически не изменяются в ходе транс-трансляции. Спираль 5 стабилизируется или защищается при взаимодействии тмРНК с рибосомой. Нуклеотиды, предшествующие открытой рамке считывания (А79-84, А86) защищаются рибосомой и сохраняют контакт до стадии терминации на природном стоп-кодоне. Изменения последовательности в MLD тмРНК влияют на реакционную способность нуклеотидов в спирали 2, что предполагает возможность существования третичного контакта между этими областями. На основании полученных данных мы предложили схему прохождения тмРНК через рибосому в ходе транс-трансляции, которая послужила базой для создания компьютерной модели. В ходе моделирования минимизация энергии с дистанционными ограничениями привела к организации псевдоузлов 2, 3, 4 и шпильки 5 тмРНК вокруг головы 30S субчастицы рибосомы выше “выступа”. Спираль 2 и псевдоузел 1 расположились во внутреннем пространстве рибосомы. Сравнение полученных моделей со структурой, полученной с помощью метода криоэлектронной томографии, позволило заключить, что петля вокруг головы 30S субчастицы рибосомы сформирована псевдоузлами 2, 3 и 4. Апробация работы. Материалы диссертации докладывались на следующих конференциях: встреча международных исследовательских школ, Мерида, Мексика, 22-25 июня, 2005 г.; международная конференция «тРНК-2005», Бангалор, Индия, 2-7 декабря 2005 г.; международная конференция “Функции РНК в генной регуляции” Роскофф, Франция, 3-7 мая, 2006 г.; 8-я международная конференция по молекулярной биологии ИМБ им. В.А. Энгельгардта «РНК-белковые взаимодействия», Московская обл., Россия, 19-24 августа 2006 г.; XV международная научная конференция для студентов, аспирантов и молодых ученых «Ломоносов – 2008», Московский Государственный Университет, Москва, Россия, 8-12 апреля, 2008 г. Структура и объем работы. Диссертационная работа изложена на 123 страницах машинописного текста и содержит следующие разделы: введение, обзор литературы, результаты и обсуждение, материалы и методы, выводы и приложение. Материал иллюстрирован 45 рисунками и 2 таблицами. Библиографический указатель включает 166 цитированных работ.