Роль митохондриальной супероксиддисмутазы и ретроградной сигнализации в механизмах устойчивости к стрессу клеток дрожжей Saccharomyces cerevisiaeНИР

The role of mitochondrial superoxide dismutase and retrograde signaling in stress resistance of yeast cells Saccharomyces cerevisiae

Источник финансирования НИР

грант РФФИ

Этапы НИР

# Сроки Название
1 1 января 2016 г.-31 декабря 2016 г. Роль митохондриальной супероксиддисмутазы и ретроградной сигнализации в механизмах устойчивости к стрессу клеток дрожжей Saccharomyces cerevisiae
Результаты этапа: 1) Мы подобрали условия (время, концентрация) митохондриально-направленного стрессового воздействия, при котором клетки без Sod2p были бы менее жизнеспособны, чем клетки без Sod1p и клетки дикого типа. Мы использовали такие стрессовые воздействия, как: антимикотики (бензалкониум хлорид, блеомицин, клотримазол, миконазол), разобщитель (С12ТРР), прооксиданты (паракват и менадион), высокие концентрации этилового спирта и тепловой шок (Рисунок 1 А, С). Мы обнаружили, что добавление токсических концентраций этилового спирта 12-18% делало клетки с репрессией гена митохондриальной супероксиддисмутазы SOD2 сверхчувствительными к такому стрессу, в отличие от клеток с репрессией SOD1 и клеток дикого типа (Рисунок 1 Б). Наши результаты подтверждают литературные данные о том, что этанол является специфическим ядом для митохондрий дрожжей. Выживаемость клеток дрожжей при различных стрессах была оценена по числу КОЕ (колониеобразующая единица), образованных на твердой среде через двое суток после прекращения стрессового воздействия. Клетки дрожжей выращивали ночь в среде YPD (2% дрожжевой экстракт, 2% бактопептон, 2 % глюкоза) до оптической плотности 0,1. Затем подвергали клетки различным видам стресса в течение 1 часа: антимикотики (бензалкониум хлорид 7,5 мкг/мл, блеомицин 30 мкг/мл, клотримазол 40 мкМ, миконазол 40 мкМ), разобщитель С12ТРР 10мкМ, прооксиданты (паракват 15мМ и менадион 25мкМ), этанол 12-18%, тепловой шок 45 0С. После стресса суспензию клеток раскапывали на чашки с твердой средой YPD в нескольких разведениях и инкубировали 48 часов при 300C. Затем подсчитывали количество выросших колоний. За 100% принимали количество КОЕ до подвергания клеток стрессу. Эксперимент проводили в 5 независимых повторах. 2) Для изучения роли Sod2p в пероксид водорода-сигнальном пути были получены штаммы: Yap1-GFP; PGAL-SOD2 Yap1-GFP; PGAL-SOD2 delta yap1; delta yap1. Yap1-GFP был получен, используя ПЦР продукты с плазмиды pFA6a-GFP(S65T)-His3MX6 с помощью праймеров, которые содержали на 5’-концах (около 55 нуклеотидов), соответствующие части нуклеотидной последовательности интересующего гена, 3’-концы (около 20 нуклеотидов), позволяющие амплифицировать с плазмиды необходимый маркерный ген (His1), а также последовательность, кодирующую GFP белок; а delta yap1 был получен путем замены на канамициновую кассету, используя ПЦР продукт с плазмиды pFA6a-kanMX4. Амплифицированную линейную ДНК переосаждали с помощью хлорида натрия и изопропанола, а затем трансформировали в дрожжевой штамм дикого типа W303 по стандартному протоколу с использованием 0,1М литий ацетатного буфера и PEG-4000. Остальные указанные штаммы (двойные мутанты) были получены путем скрещивания дрожжей противоположного типа спаривания и растаскивания тетрад. Мы обнаружили, что в условиях репрессии SOD2 не происходило релокализации транскрипционного фактора Yap1p в ядро при добавлении спирта, а в контроле происходило (Рисунок 2). Таким образом, результат показывает необходимость Sod2p для активации Yap1p. Для этого эксперимента клетки Yap1-GFP; PGAL-SOD2 Yap1-GFP инкубировали 15 минут с этанолом (12-16%) или H2O2 1мМ (положительный контроль, так как известно, что Yap1p активируется H2O2, после чего релокализуется в ядро и запускает экспрессию антиоксидантных генов). Флуоресцентные микрофотографии были получены с помощью микроскопа Olympus BX51. Для подтверждения локализации Yap1p в ядре мы окрашивали клетки DAPI (краситель ядра). Мы подобрали такие условия, при которых возможна окраска ядерной ДНК красителем DAPI живых клеток без стандартной фиксации в 70% спирте (так как спирт отрицательно влиял на свечение GFP). Для этого мы инкубировали клетки после стресса с DAPI (С=2 мкг/мл) всего 15 минут и не отмывали от краски. Кроме того, мы решили дополнительным методом подтвердить предположение о том, что Sod2p необходим для активации Yap1p. Для этого получили штаммы, в которых продукты генов-мишеней Yap1p, Trx2p и Gsh1p, с GFP меткой и обнаружили, что уровень активации генов был понижен в условиях репрессии SOD2. Для этого эксперимента клетки инкубировали с 1мМ H2O2 (положительный контроль) или без H2O2, затем отмывали и инкубировали в среде YPD 2 часа. После этого уровень флуоресценции Trx2-GFP и Gsh1-GFP смотрели на проточном флуориметре CytoFLEX (Beckman Coulter). Но этот эксперимент предварительный и требует повторов для статистической достоверности. Более того, мы выделили митохондрии из контрольного штамма и штамма с репрессией SOD2 и, измерив скорость генерации перекиси водорода митохондриями, обнаружили, что репрессия SOD2 немного уменьшала скорость образования H2O2 изолированными митохондриями. Митохондрии выделяли методом, описанным в статье (Bazhenova E.N. et. al (1998) Characterization of a high capacity calcium transport system in mitochondria of the yeast Endomyces magnusii, J Biol Chem), образование H2O2 смотрели с помощью тест-системы, включающей Amplex Red и пероксидазу хрена. Этот эксперимент также предварительный и требует повторов. Также мы обнаружили, что делеция гена YAP1 (delta yap1), как и репрессия гена SOD2 (PGAL-SOD2), в одинаковой степени понижала устойчивость клеток к этиловому спирту. Однако репрессия гена SOD2 не влияла на жизнеспособность клеток дрожжей в штамме с делетированным геном YAP1 при добавлении этанола (PGAL-SOD2 delta yap1) (Рисунок 3). Это указывает на наличие генетического взаимодействия между двумя генами, предполагая, что оба белка Sod2p и Yap1p участвуют в одном и том же сигнальном каскаде. Выживаемость данных штаммов оценивали по числу КОЕ после инкубации клеток с 16% этанолом 1 час. Таким образом, мы предполагаем, что Sod2p и Yap1p являются компонентами одного сигнального каскада, передающими информацию от митохондрий к ядру и играющими важную роль в клеточном антистрессовом ответе на этанол. 3),4) Для изучения взаимодействия пероксид водорода-опосредованного и RTG-пути были получены штаммы: PGAL-SOD2 delta rtg2, PGAL-SOD2 delta mks1, Rtg3-GFP PGAL-SOD2, Rtg3-GFP delta yap1, Yap1-GFP delta rtg2, Yap1-GFP delta mks1. Мутанты были получены путем скрещивания дрожжей противоположного типа спаривания и растаскивания тетрад. Мы обнаружили, что делеция гена RTG2 в диком типе (delta rtg2) и на фоне репрессии SOD2 (PGAL-SOD2 delta rtg2) в одинаковой степени уменьшала выживаемость клеток при действии этанола, что указывает на наличие генетического взаимодействия между RTG2 и SOD2 (Рисунок 4А). Выживаемость штаммов после инкубации клеток с 16% этанолом 1 час оценивали по числу КОЕ. Кроме того, с помощью микроскопа Olympus BX51 и окраски DAPI мы посмотрели локализацию Yap1-GFP в штаммах с неактивным (delta rtg2) и активным (delta mks1) RTG-путем. Мы показали, что делеция RTG2 вызывала перманентную активацию Yap1p в контроле и при репрессии SOD2, а при делеции MKS1 такого эффекта не наблюдалось (Рисунок 4Б, В). Эти данные указывают на взаимодействие двух путей. Также мы обнаружили, что искусственная активация RTG-пути с помощью вещества MSX (2мМ в течение 30) или делецией MKS1 восстанавливала устойчивость штамма с репрессией SOD2 к этанолу (Рисунок 4Г). Таким образом, мы предполагаем, что активация RTG-пути взаимодействует с пероксид водорода-опосредованным путем, препятствуя активации Yap1p и, в то же время, запускает свой независимый путь антистрессового ответа на этанол. Мы обнаружили, что белок Rtg3p был локализован в ядре и в контроле, и в мутантах Rtg3-GFP PGAL-SOD2, Rtg3-GFP delta yap1 вне зависимости от добавления этанола, что не давало нам возможности исследовать локализацию Rtg3-GFP при стрессе этанолом. Возможно, это особенность нашего контрольного штамма дрожжей в связи с тем, что в нем изначально высокий базовый уровень активации RTG-пути. Однако мы уверены, что RTG-путь корректно работает в наших дрожжах, так как ранее нами было показано, что в клетках без мтДНК подавлена экспрессия генов-мишеней RTG-пути (отрицательный контроль) (Starovoytova et.al, FEMS Yeast Rec, 2013, 13: 367-374). 5) Проведение генетического скрининга для поиска генов, вовлеченных в систему передачи сигнала от митохондрий к ядру. Для решения этой задачи мы трансформировали штамм PGAL-SOD2 гиперэкспрессионной библиотекой YEp-13 lib LEU2 (случайный участок геномной ДНК дрожжей на мультикопийной плазмиде). В качестве контроля штамм PGAL-SOD2 трансформировали плазмидой pRS425, содержащей только маркерный ген LEU2, но не содержащей библиотеку дрожжевых генов. В качестве стрессового воздействия использовали 18% этанол (как показано ранее специфически токсичное воздействие для клеток с репрессированной Sod2p). В результате трансформации выросло примерно 800 клонов. Затем делали смыв с чашки, оценивали концентрацию клеток и данную суспензию клеток использовали для скрининга. Брали 50 000 клеток и инкубировали с 18% этанолом 1 час и размазывали на чашке со средой без лейцина. В результате из 800 клонов сверхэкспрессионной библиотеки было отобрано 20 клонов. Эти клоны проверяли по следующим критериям: способность расти на средах с несбраживаемым источником углерода – глицерином, мультикопийная плазмида отобранного клона увеличивает выживание в условиях стресса (18% этанол 1 час) на средах с репрессированным SOD2, мультикопийная плазмида отобранного клона не влияет на выживаемость штамма в условиях сверхпродукции SOD2 (среда с галактозой). В результате было отобрано два клона, из которых выделили плазмидную ДНК, клонировали ее в клетках E.coli и перетрансформировали обратно в штамм дрожжей PGAL-SOD2. В обоих случаях подобная проверка дала отрицательный результат: полученные клоны не отличались по устойчивости к стрессу от клеток контрольного штамма. Этот результат можно объяснить тем, что отобранные нами клоны содержали мутацию в геномной ДНК, обуславливающую повышенную резистентность к этанолу. Таким образом проведенный нами скрининг дал отрицательный результат. Единственным положительным побочным результатом скрининга оказалось наблюдение о том, что сверхэкспрессия гена LEU2 (контрольная плазмида) повышает устойчивость штамма PGAL-SOD2 к стрессу (Рисунок 5). Можно предположить, что репрессия митохондриальной супероксиддисмутазы приводит нарушению работы системы синтеза FeS-кластеров, которые используются рядом ферментов биосинтеза аминокислот.

Прикрепленные к НИР результаты

Для прикрепления результата сначала выберете тип результата (статьи, книги, ...). После чего введите несколько символов в поле поиска прикрепляемого результата, затем выберете один из предложенных и нажмите кнопку "Добавить".

Прикрепленные файлы


Имя Описание Имя файла Размер Добавлен
1. Рисунки к отчету risunki_k_otchetu.pdf 496,0 КБ 18 декабря 2016 [AnnaZyrina]