Эпигенетические механизмы и регуляция транскрипции: структурно-функциональный анализ и разработка новых методов исследованияНИР

Epigenetic mechanisms and regulation of transcription: structure-functional analysis and development of new research techniques

Источник финансирования НИР

грант РНФ

Этапы НИР

# Сроки Название
1 2 мая 2017 г.-31 декабря 2017 г. Эпигенетические механизмы и регуляция транскрипции: структурно-функциональный анализ и разработка новых методов исследования
Результаты этапа: Разработаны новые междисциплинарные комплексные экспериментальные подходы для анализа структуры и динамики хроматина. С помощью разработанных методов описаны различные механизмы функционирования генома эукариот и транскрипции хроматина. В рамках изучения механизмов дистанционных взаимодействий и пространственной организации генома а) установлены количественные параметры гибкости и подвижности ДНК в зависимости от нуклеотидного состава, наличия одно- и двунитевых разрывов и связывания интеркалирующих соединений с ДНК; б) определены механизмы и построены динамические модели разворачивания ДНК и октамера гистонов в различных нуклеосомах; в) определены структуры и построены модели комплексов линкерных гистонов и их отдельных доменов c нуклеосомой, определена их роль в формировании хроматосомы – укладки ДНК более высокого порядка. Дано пошаговое описание процесса транскрипции ДНК нуклеосом эукариот: а) методами футпринтинга определены структуры новых ключевых интермедиатов транскрипции хроматина; б) определены механизмы остановки РНК- полимеразы на внутринуклеосомных петлях ДНК; в) определены трёхмерные структурыкомплексов нуклеосом с транскрибирующей РНК-полимеразой 2 с использованием методов ПЭМ и молекулярного моделирования. Проанализированы механизмы действия шаперона гистонов, белкового фактора FACT дрожжей, а именно: а) установлена его роль в элонгации транскрипции; б) определен механизм FACT-зависимого, АТФ-независимого разворачивания структуры нуклеосом; в) определены ДНК-гистоновые, гистон-гистоновые и FACT-нуклеосомные взаимодействия, играющие роль в этом процессе; г) определены трёхмерные структуры комплексов нуклеосом с yFACT с использованием методов ПЭМ и молекулярного моделирования. Разработаны новые современные экспериментальные и вычислительные подходы для изучением сложных динамических процессов. Полученные научные результаты важны для понимание фундаментальных процессов функционирования хроматина в эукариотическом ядре. Нарушения в механизмах, которые исследованы в рамках проекта, приводят к преждевременному старению, а также развитию раковых и других заболеваний. Полученные научные результаты позволят установить причины ряда патологических процессов у эукариот и в дальнейшем могут быть использованы при разработке новых лекарственных препаратов.
2 1 января 2018 г.-31 декабря 2018 г. Эпигенетические механизмы и регуляция транскрипции: структурно-функциональный анализ и разработка новых методов исследования
Результаты этапа: Проведено моделирование геометрии последовательностей (CA4T4G)15 и (CT4A4G)15. на основе данных ЯМР. Установлена некорректность выводов статьи (Stefl et al. PNAS 102, pp 1177-1182, 2004) о суперскрученной конформации последовательности (CA4T4G)15 и определена правильная структура такой олигонуклеотидной последовательности. Для изучения гибкости молекул ДНК в растворе были построены модели фрагмента центромерной ДНК дрожжей, установлены положения флуорофоров, оптимальные для изучения конформации этого олигонуклеотида, получены и очищены флуоресцентно-меченые олигонуклеотиды. Методом spFRET-микроскопии впервые получены экспериментальные данные, напрямую свидетельствующие в пользу изогнутой конформации фрагмента центромерной ДНК дрожжей в растворе. Данная конформация может играть ключевую роль для выполнения центромерной ДНК ее биологической функции – взаимодействия с белками кинетохора и распределения хромосом по дочерним клеткам после деления. В экспериментах по изучению жесткости и петлеобразования ДНК на основе данных spFRET-микроскопии были определены факторы гибкости (j-факторы) олигонуклеотидов с жесткой и гибкой структурой, которые подтвердили теоретические расчеты. Установлено, что ведение одноцепочечного разрыва увеличивает j-факторы жестких и гибких олигонуклеотидов в ~2,5 раза. Показано, что при взаимодействии с цисплатином j-фактор гибкого олигонуклеотида увеличивается в 5 раз и превышает в 1,9 раз гибкость этого же олигонуклеотида с одноцепочечным разрывом. Было смоделировано и экспериментально определено влияние изменения состава ДНК и гистонов на структуру и динамику нуклеосом. Показано, что наличие линкерного участка ДНК только с одной стороны нуклеосомы приводит к дестабилизации ее структуры по сравнению со структурой нуклеосом с двумя линкерами или без них. Эти данные свидетельствуют о взаимном влиянии линкеров друг на друга, приводящем к стабилизации структуры кор-нуклеосом. Показано, что динамическое отворачивание ДНК от октамера гистонов в присутствии различных концентраций ионов может происходить обратимо без потери гистонов с участием до 35 п.н. и сопровождаться образованием двух новых конформационных состояний. Установлено, что в составе комплекса нуклеосом с гистоном H1.0 X. laevis линкерные фрагменты принимают единственную конформацию, а структурирующий эффект гистона Н1 распространяется вдоль линкерной ДНК на расстояние не менее 25 п.н. от коровой области нуклеосомы. Показано, что удаление N-концевого хвоста гистона Н2В вызывает дестабилизацию структуры линкерной области нуклеосомы. Это указывает на важную роль взаимодействий «хвостов» коровых гистонов с линкерными фрагментами ДНК, приводящими к сближению линкеров, которое, по-видимому, необходимо для правильной упаковки нуклеосом в фибриллы. Подтверждена предложенная нами модель, согласно которой в процессе разворачивания нуклеосомы дрожжевым гистоновым шапероном yFACT гистоновый тетрамер H3/H4 остается связанным с ДНК, в то время как димер H2A/H2B теряет контакты с ДНК, но остается связанным с yFACT или тетрамером гистонов Н3/Н4. Установлено, что для разворачивания нуклеосомы необходимы С-концевые домены yFACT, поскольку варианты белков с удаленными С-концами (dCТ) Spt16-Pob3dCT и Spt16dCT-Pob3dCT приводили либо к существенному снижению эффективности yFACT-опосредованного разворачивания нуклеосомы, либо к полной потере способности yFACT образовывать комплекс с нуклеосомой. Показано, что нуклеосомы, несущие мутацию M62E в гистоне H2B менее стабильны, чем нуклеосомы дикого типа, и при сильном разведении в процессе экспериментов по spFRET-микроскопии переходят в открытую конформацию даже в отсутствии yFACT. В то же время, белки Spt16/Pob3 фактора FACT хуже формируют комплекс с мутантными нуклеосомами, чем с нуклеосомами дикого типа. Таким образом, мутация M62E гистона H2B нарушает образование комплекса yFACT с нуклеосомой. Методами футпринтинга ДНК с применением ДНКазы I и гидроксильных радикалов была определена структура элонгационного комплекса, содержащего РНК-полимеразу, остановленную в положении +39 п.н. после прохождения промотор-проксимальной границы нуклеосомы (ЭК(+39)) (рис. 5.1). Установлено, что в ЭК(+39) ДНК-гистоновые взаимодействия формируются как перед, так и за транскрибирующей молекулой РНК-полимеразы. Это свидетельствует в пользу образования в ЭК(+39) внутринуклеосомной петли ДНК малого размера (предположительно Ø-петли), способствующей сохранению нуклеосомы в процессе транскрипции. Получены новые ДНК-матрицы (и нуклеосомы на их основе), содержащие рандомизованные (случайные) последовательности ДНК в участках -(15÷1) п.н. и +(5÷30) п.н., а также нуклеосомы с инвертированной по отношению к транскрибирующей РНК полимеразе нуклеосом-позиционирующей последовательностью «603». Методом транскрипции in vitro установлено, что высота барьера, формирующегося на пути РНК-полимеразы 2 за 10 п.н. до входа ДНК в нуклеосому определяется последовательностью ДНК в участке -(15÷1) п.н., и силой ДНК-гистоновых взаимодействий в участке +(5÷30) п.н. Была получена новая нуклеосомная матрица, обеспечивающая формирование остановленного ЭК в положении -9 п.н. (ЭК(-9)), где наблюдается наиболее сильная задержка РНК полимеразы 2 при преодолении изучаемого нуклеосомного барьера. Методом футпринтинга ДНК с использованием ДНКазы I и гидроксильных радикалов была определена структура ЭК(-9). С учётом экспериментальных данных по футпринтингу ДНК была получена модель ЭК(-9). Были определены распределения транскриптов (картина паузирования) РНКП2 после транскрипции нуклеосомных матриц in vitro в присутствии различных мутантных вариантов hFACT (рис. 6.1). Было показано, что: (а) С-концевая область (а.о. 618-709) субъединицы SSRP1 сильно уменьшает задержку РНКП2 в положении +(35÷48) п.н. в нуклеосоме; (б) участки Spt16 (а.о. 927-1006) и/или SSRP1(а.о. 438-617) облегчают транскрипцию через нуклеосому; (в) участки Spt16 (а.о. 645-926) и/или SSRP1 (а.о. 196-437) облегчают транскрипцию через нуклеосому; (г) домены димеризации субъединиц Spt16/ SSRP1 не влияют на транскрипцию через нуклеосому. С использованием spFRET-микроскопии было обнаружено, что hFACT и кураксины значительно и синергично влияют на структуру нуклеосом (рис. 6.2). Установлено, что N-концевой домен субъединицы Spt16 необходим для реорганизации хроматина комплексом hFACT. Показано, что реорганизация нуклеосомы, вызванная hFACT в присутствии кураксинов является симметричной и происходит по принципу «все-или-ничего». Таким образом, реорганизация нуклеосомы, опосредованная hFACT, имеет ту же природу, что и опосредованная дрожжевым yFACT. В сотрудничестве с лабораторией Е. Гуровой (Rosewell Cancer Сenter, США) с использованием геномных методов (ChIP-Seq и RNA-Seq) установлено геномное распределение субъединицы SSRP1 на транскрибируемых генах в присутствии и отсутствии кураксинов. Был определен эффект кураксинов и нетранскрибируемого хроматина на распределение транскриптов после hFACT-зависимой транскрипции нуклеосомных матриц «603» РНК-полимеразой 2 in vitro, и выявлены участки нуклеосомной ДНК, на транскрипцию которых они влияют. Таким образом, был определен механизм ингибирования hFACT-зависимой транскрипции хроматина кураксинами in vivo: кураксины вызывают перераспределение фактора hFACT с транскрибируемых генов на другие участки генома, и таким образом ингибируют транскрипцию. Было показано, что in vitro в присутствии кураксинов происходит перераспределение комплекса hFACT с транскрибируемых на нетранскрибируемые нуклеосомы и происходит ингибирование транскрипции хроматина. Разработана методика подготовки образца остановленного элонгационного комплекса РНК-полимеразы (РНКП) E. coli с нуклеосомой для исследования с помощью криоэлектронной микроскопии. Разработана методика очистки комплекса от избытка свободной РНКП и непродуктивных комплексов на гепариновой смоле. Для концентрирования элонгационного комплекса был применен аффинный монослой, сформированный липидами, связанными с ионами Ni. Применение подготовленных аффинных сеток с иммобилизованным монослоем липидов позволило предотвратить агрегацию частиц комплекса на поверхности сетки. Разработанная методика была применена для получения методом криоэлектронной просвечивающей микроскопии трехмерной реконструкции элонгационного комплекса ЭК(+39), остановленного в положении +39 п.н. после входа в нуклеосому. Интерпретация данных с применением докинга кристаллических структур РНКП E. coli и нуклеосомы показала наличие в составе ЭК(+39) Ø-петли, образованной нуклеосомной ДНК, и позволила прояснить структурные особенности данного комплекса. С помощью просвечивающей электронной микроскопии и анализа на основе преобразований Фурье визуализирована структура двумерных кристаллов ДНК-связывающего гистоноподобного белка Dps с ДНК и установлено, что ориентация Dps в кристаллах зависит от длины взаимодействующей ДНК.

Прикрепленные к НИР результаты

Для прикрепления результата сначала выберете тип результата (статьи, книги, ...). После чего введите несколько символов в поле поиска прикрепляемого результата, затем выберете один из предложенных и нажмите кнопку "Добавить".

Прикрепленные файлы


Имя Описание Имя файла Размер Добавлен
1. Полный текст статьи Любителев и др 2017 Lyubitelev_Vestnik_2017.pdf 284,8 КБ 10 декабря 2017 [dvnikitin]
2. статья VestnikMSU_2_18.pdf 580,4 КБ 12 июля 2018 [ShaitanKV]